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Avambraccio attraversato da luce laser rossa
Che cos'è l'irradiazione laser endovenosa

La luce, dentro il sangue: cosa fa e cosa sappiamo.

Una fibra sterile monouso porta luce laser a 660 nm direttamente in una vena del braccio. Nessuno strato di pelle da attraversare: a 660 nm, con penna TL e adattatore Haemo-Laser, la potenza alla punta è dichiarata nelle IFU e la dose si scrive in cartella. Qui trovate la biologia, passaggio per passaggio, con il livello di prova di ciascuno.

  • La fibra nel vaso: 1–5 mW all'estremità distale, il dato che il fabbricante dichiara nelle IFU (adattatore v2.4, cap. 5).
  • Due cromofori, due geometrie: il rosso attraversa mezzo millimetro di sangue, il violetto pochi micrometri (calcolo su dati Prahl).
  • Una dose dichiarata: da 1,8 a 13,5 J per seduta, cioè 1–5 mW per 30–45 minuti (IFU v2.4).
1–5 mWalla punta della fibra
IFU adattatore v2.4
Profondità a cui il sangue venoso spegne la luce
≈ 0,5 mm

660 nm · circa settanta diametri di globulo rosso

Ogni linea è un passo di 40 µm dalla punta della fibra; l'altezza è la luce residua, e−x/δ. Penetrazione effettiva 1/µeff da coefficienti di estinzione Prahl (omlc.org), Hb 150 g/L, saturazione 70%; per il 405 nm la stima va da 3 a 10 µm. Stima fisica, non misura in vena: nessun modello Monte Carlo pubblicato descrive una fibra endovenosa in flusso. Usate l'interruttore 660 / 405 in alto. Esploratore completo
Fisica della luce nel sangue

Cosa assorbe la luce nel sangue

Nulla succede finché una molecola non assorbe il fotone. Per questo un sistema endovenoso dichiara la lunghezza d'onda con precisione: scegliere il colore significa scegliere il bersaglio. A 660 nm il sangue è quasi trasparente e la luce raggiunge le cellule nucleate e la parete del vaso; a 405 nm si è sulla banda di Soret, l'assorbimento più intenso dell'emoglobina, e la luce si esaurisce nello strato che tocca la punta.

Fra 405 e 660 nm la profondità cambia di oltre due ordini di grandezza. Non è un rosso più energico: è un'altra chimica, in un altro volume. Fonti: Hamblin & Huang 2013, cap. 3, 5 e 46; dati Prahl.

EmoglobinaDeossi-Hb assorbe nel rosso più di HbO₂, ma poco: la luce diffonde per mezzo millimetro.
Citocromo c ossidasiComplesso IV mitocondriale, bande di Karu a 620, 680, 760 e 825 nm. Solo nelle cellule con mitocondri: non nei globuli rossi maturi.
Porfirine e flavinePorfirine 400–420 nm, flavine intorno a 370 e 450 nm, NADH-deidrogenasi mitocondriale: i bersagli del violetto.
Dalla fibra al sistema, in tre passaggi
  1. Fibra nel vasoAgo a farfalla, fibra sterile monouso, 1–5 mW alla punta per 30–45 minuti.Dato del fabbricante · IFU v2.4
  2. CromoforoEmoglobina, citocromo c ossidasi di leucociti e piastrine, ossido nitrico legato all'eme.Fisica consolidata · Karu, Prahl
  3. Risposta cellulareATP, mtDNA e marcatori redox nelle cellule irradiate: in coltura e in un piccolo RCT con sham.Livello debole-moderato · Huang 2012
  4. Effetto sistemicoIl passaggio meno dimostrato: segnali dalle cellule irradiate verso tessuti mai illuminati. La freccia è tratteggiata perché la letteratura non l'ha chiusa.In valutazione · Karu 2013
Meccanismo

Dalla fibra al sistema

La catena ha tre anelli e ciascuno ha un livello di prova diverso. Il primo è fisica, il secondo è misurato in laboratorio e in parte sul sangue umano, il terzo è un'ipotesi aperta. Tenerli distinti è ciò che permette al medico di presentare la terapia con precisione.

1 · La fibra nel vaso: una sorgente misurabileLivello 4 · consolidato
Potenza all'estremità distale 1–5 mW, divergenza 523 mrad, NOHD 4,7 cm (IFU adattatore v2.4, cap. 5). L'energia è potenza per tempo: 1,8–13,5 J per seduta. Per il modulo 405 nm la potenza distale non è dichiarata nelle IFU disponibili: per questo il livello scende.
2 · Chi cattura il fotoneLivello 4 · consolidato
Gli spettri di assorbimento dell'emoglobina (Prahl) e le bande d'azione della citocromo c ossidasi (Karu, Hamblin & Huang 2013, cap. 46) sono fisica nota da decenni. Il 660 nm cade fra le bande a 620 e 680 nm; il 405 nm sulla Soret delle porfirine.
3 · La risposta della cellula irradiataLivello 3 · moderato
In coltura: più ATP e un breve segnale di specie reattive dell'ossigeno. Nell'uomo: Huang 2012, RCT con sham a 632,8 nm, aumento di ATP e copie di mtDNA nei leucociti. Per il violetto il bersaglio proposto sono i flavoenzimi dei complessi I e II, misurato in coltura e non nel sangue in vena.
4 · Il segnale redox e il sangue che cambia formaLivello 2 · debole
Modello proposto: uno stress ossidativo lieve e transitorio che induce una risposta antiossidante; in Huang 2012 capacità antiossidante in aumento e MDA in calo rispetto allo sham. Sulla reologia i dati sono in vitro e bifasici (Zhu 2022), contrastanti nell'uomo (Yamaikina 2008).
5 · Dal sangue irradiato al resto del corpoLivello 1 · ipotesi
Il sangue direttamente irradiato è stimato nello 0,2–4% della volemia per seduta (stima Devamed, non misurata). Un effetto sistemico, se esiste, passa per segnali delle cellule irradiate: lo sostiene un solo abstract (Vitreshchak 2003). Karu scrive che questi meccanismi non sono ancora stabiliti.
6 · La dose: una finestra, non una scalaLivello 2 · debole
Nella fotobiomodulazione la risposta alla dose è a campana: più luce non significa più effetto (Karu; Walski 2024; Zhu 2022). Per la via endovenosa nessuno studio ha confrontato dosi diverse a parità del resto; l'intervallo 3–5 mW è un'indicazione del fabbricante, non il risultato di una curva dose-risposta.
Il meccanismo interattivo
MisureBiomarcatori sul sangue umano e in vitro

Che cosa è stato misurato

Huang 2012: 36 adulti, 12 con ILIB, 12 con sham, 12 sani; 632,8 nm, 4 mW per 60 minuti, 15 sedute in 3 settimane. Nei leucociti dei trattati ATP e copie di DNA mitocondriale salgono rispetto allo sham. È l'unico RCT con sham che le misura.

Vedi la biblioteca delle evidenze Fonti · Huang 2012, Photomed Laser Surg 30:579 · Yamaikina 2008 · Zhu 2022
↑ vs sham
↑ vs shamATPleucociti ↑ vs shamcopiemtDNA ↑ vs shamcapacitàantiossid. ↓ MDAperossidaz.lipidica ↓ 1ª sedutadeformab.nell'uomo bifasicodeformab.in vitro Huang 2012Huang 2012Yamaikina 2008 · Zhu 2022
Gruppo selezionatoGrafico qualitativo: le barre hanno tutte la stessa altezza per scelta e indicano solo la direzione dell'effetto riportata, non la sua grandezza.
Protocollo IFU · misure opzionali Devamed

Il ciclo

La seduta passo per passo
Due vie, due dosi

Endovenoso Haemolaser vs transcutaneo al polso

Caratteristica Haemolaser Transcutaneo al polso
Luce nel sangueLa luce emessa alla punta entra direttamente nel lume venoso, su una frazione stimata di volemiaQuota non misurata: gran parte resta in cute e sottocute
Dose dichiarabilePotenza distale × tempoJoule calcolati sull'apertura del diodo, non al sangue
Potenza tipica1–5 mWIFU adattatore v2.4~100 mW60–250 mW nei protocolli
Energia per seduta1,8–13,5 J1–5 mW × 30–45 min~180 Jalla cute, 100 mW × 30 min
Letteratura di riferimento632,8 nm endovenosoHe-Ne, protocollo russo 1981; Huang 2012; Su 2024660 nm transcutaneoScuola brasiliana; da Silva 2020; Celia 2021

Le dosi differiscono di 13–100 volte e il bersaglio fisico è diverso: i risultati di una via non sono trasferibili all'altra, in nessuna delle due direzioni. Fonti: IFU Heltschl v2.4; Díaz 2025; dossier Devamed sulle vie di somministrazione.

Tecnologia austriaca, supporto italiano

Dal 1994 Heltschl progetta e produce a Gallspach; oggi con un sistema qualità certificato EN ISO 13485. HILARIS arriva in Italia con istruzioni per l'uso in italiano, formazione e assistenza Devamed, 36 mesi di garanzia: un sistema che si spiega con i dati.

Scopri il sistema
8

Studi randomizzati sull'ILIB

L'intero corpus mondiale; meta-analisi non fattibile per eterogeneità. Díaz 2025, Photodiagnosis Photodyn Ther 53:104618.

340

Pazienti in tutto

Campioni da 17 a 101; follow-up entro 3 mesi nel 75% degli studi. Díaz 2025.

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632,8nm

Il rosso storico

Elio-neon, 1–3 mW (Meschalkin e Sergiewski 1981). Il 660 nm cade nella stessa finestra spettrale, con un diodo: il trasferimento dei risultati è per analogia, non per dato, e non esistono RCT endovenosi a 660 nm.

0

RCT a 405 nm per via endovenosa

Solo serie minime e un confronto 405 vs 630 nm senza differenze (Kazemikhoo 2015, n=24, via Tomé 2020).

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Configurazioni HILARIS Haemo-Laser®

Tutte le configurazioni
Scia di luce laser rossa
Ciò che sappiamo, ciò che no
I meccanismi degli effetti sistemici dell'irradiazione del sangue «non sono ancora stati stabiliti». Lo scrive Tiina Karu, che ha identificato il fotoaccettore mitocondriale. Devamed lo scrive per primo, perché un medico si fida di chi dichiara i confini.
Tiina KaruChromophores for low-level laser therapy, in Hamblin & Huang (eds), Handbook of Photomedicine, CRC Press 2013, cap. 46

Domande scientifiche

Le risposte riportano fonte e livello di certezza. Altre domande nella pagina FAQ.

Perché 660 nm?
A 660 nm il sangue è quasi trasparente: la luce diffonde per circa mezzo millimetro (calcolo su dati Prahl) e raggiunge leucociti, piastrine e parete venosa. Il 660 cade fra le bande a 620 e 680 nm della citocromo c ossidasi (Karu) e nella finestra 630–670 nm dove l'assorbimento di Hb e HbO₂ differisce di più (Xu 2015). La letteratura clinica, però, è a 632,8 nm: l'estensione al 660 è per analogia spettrale.
Perché 405 nm?
È la banda di Soret, l'assorbimento più intenso dell'emoglobina e delle porfirine; assorbono anche flavine e NADH-deidrogenasi. La luce si esaurisce in 3–10 µm e agisce sullo strato di sangue che scorre davanti alla punta. Per via endovenosa non esistono RCT; Xu 2015 non considera il blu una scelta razionale per il trasporto di ossigeno. È un colore con un meccanismo proprio; per via endovenosa non ha ancora una destinazione d'uso documentata nelle IFU disponibili né dati clinici controllati.
Perché solo 1–5 mW?
In vena non ci sono strati da attraversare: arriva al sangue tutta la luce emessa. Il protocollo originale russo lavorava a 1–3 mW (Meschalkin e Sergiewski 1981) e la risposta alla luce è a campana. La penna da 50–200 mW serve all'uso locale: in vena l'adattatore porta sempre 1–5 mW, e una penna più potente non accorcia la seduta (IFU v2.4).
I globuli rossi non hanno mitocondri: su cosa agisce la luce?
È vero, e cambia la storia. I bersagli sono l'emoglobina degli eritrociti (fotolisi dell'ossido nitrico, membrana), le cellule nucleate e le piastrine, che hanno mitocondri, l'endotelio attorno alla punta e alcuni cromofori del plasma. L'unico RCT con sham che ha misurato ATP e mtDNA lo ha fatto nei leucociti (Huang 2012).
Si rischia l'emolisi?
L'emolisi compare in vitro ad alte fluenze (Walski 2024) e Yamaikina 2008 riporta una lieve emolisi dopo la prima seduta. A 1–5 mW si consegnano pochi joule per seduta. Negli studi disponibili, a 632,8 nm e con altri dispositivi, gli eventi riportati sono rari, lievi e transitori; per il 405 nm mancano dati. Le controindicazioni sono quelle delle IFU.
Quanta volemia si irradia?
Nessun documento del fabbricante lo stima. La stima Devamed, dichiarata come ipotesi: davanti alla fibra transitano 300–2.250 mL in 30–45 minuti, ma solo una frazione della sezione del vaso riceve luce utile. Il sangue direttamente irradiato è dell'ordine di 10–200 mL, lo 0,2–4% della volemia, con un margine ampio per la variabilità di flusso e lume.
Perché il J/cm² non si applica?
Nel sangue che scorre non esiste un'area bersaglio: la fluenza calcolata sulla faccia della fibra (circa 6.900 J/cm² in 45 minuti a 5 mW) non ha significato biologico. Per rendere riproducibile una seduta si dichiarano lunghezza d'onda, potenza misurata alla punta, sede, durata, numero e cadenza delle sedute.
Che differenza c'è con il laser transcutaneo al polso?
Il transcutaneo lavora a circa 100 mW sull'arteria radiale, con circa 180 J nominali alla cute; quanta luce arrivi al sangue non è misurato. L'endovenoso porta 1–5 mW direttamente nel vaso. Dosi e bersagli sono diversi: i risultati non si trasferiscono da una via all'altra.
Cosa dice la letteratura?
Otto RCT, 340 pazienti, quattro a basso rischio di bias e quattro con alcune criticità, follow-up breve nella maggior parte (Díaz 2025). Evidenza a bassa certezza, in crescita; nessuno studio pubblicato usa questo dispositivo. Le indicazioni del dispositivo sono quelle delle IFU: miglioramento della circolazione nei disturbi circolatori e trattamento del dolore nelle patologie reumatiche.
Dove leggo le fonti?
La bibliografia essenziale è in fondo a questa pagina. Le schede per studio, con disegno, campione e parametri, sono nella biblioteca delle evidenze; i dati di penetrazione nell'esploratore spettro-penetrazione; i meccanismi completi nella pagina di approfondimento.
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La biologia, vista da vicino: 15 minuti in video-call.

Il dispositivo acceso, la fibra, l'adattatore al braccio e i parametri della seduta. Un referente clinico Devamed risponde alle domande di questa pagina, con le fonti.

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Bibliografia essenziale

  1. Díaz L, Chaple Gil AM, Becerra A. The clinical efficacy of intravascular laser irradiation of blood (ILIB): a narrative review of randomized controlled trial. Photodiagnosis Photodyn Ther 2025;53:104618. doi:10.1016/j.pdpdt.2025.104618
  2. Huang SF, Tsai YA, Wu SB, et al. Effects of intravascular laser irradiation of blood in mitochondria dysfunction and oxidative stress in adults with chronic spinal cord injury. Photomed Laser Surg 2012;30(10):579-586. doi:10.1089/pho.2012.3228
  3. Xu Y, Lin Y, Gao S. Optimal laser wavelengths for ILLLIT. Lasers Med Sci 2015;30:1373-1376. doi:10.1007/s10103-015-1732-7
  4. Karu TI. Chromophores (photoacceptors) for low-level laser therapy. In: Hamblin MR, Huang YY (eds). Handbook of Photomedicine. CRC Press, 2013, cap. 46; cap. 3 e 5 per interazioni luce-tessuto e penetrazione.
  5. Prahl S. Optical absorption of hemoglobin. Oregon Medical Laser Center, omlc.org/spectra/hemoglobin.
  6. Zhu R, et al. Pinzette ottiche su globuli rossi umani, 450 nm, soglie bifasiche. J Photochem Photobiol B 2022. doi:10.1016/j.jphotobiol.2022.112438
  7. Walski T, et al. Globuli rossi bovini, risposta bifasica. J Photochem Photobiol B 2024. doi:10.1016/j.jphotobiol.2024.112958
  8. Yamaikina. Effetti reologici dopo la prima seduta. J Eng Phys Thermophys 2008;81:1207. DOI non riportato nella fonte.
  9. Vitreshchak TV, Mikhailov VA, Piradov MA, et al. Bull Exp Biol Med 2003;135(5):430-2. doi:10.1023/a:1024950922391
  10. Su YC, et al. RCT con sham, gonartrosi. Int J Mol Sci 2024;25:13608. doi:10.3390/ijms252413608
  11. Kazemikhoo N, Ansari F. 405 vs 630 nm in 24 diabetici, 14 sedute, 2015; citato in Tomé 2020. DOI non riportato nella fonte.
  12. Meschalkin e Sergiewski, 1981: protocollo originale 632,8 nm, 1–3 mW, 20–60 min, 10 sedute; via capitolo Weber (ISLA).
  13. Heltschl GmbH. Istruzioni per l'uso: adattatore per pazienti Haemo-Laser, ver. 2.4, 2024-01 (IT), cap. 2.2, 5 e 7.